编辑: star薰衣草 | 2019-09-20 |
并请检查电泳 槽密封条是否需要翻转,以保证内槽密封. ExpressPlus? 预制胶能否用于非变性电泳? 可以用于非变性电泳.非变性电泳由于受蛋白质的亚基及电荷量少的影响,存在条带偏移率低(泳动速度慢) 、条 带不够锋利等现象.由于非变性电泳时间较长,请根据实验设计先进行电泳条件优化. 应该使用什么电泳缓冲液? 推荐使用 MOPS 电泳缓冲液.对于小分子量蛋白,请使用 MES 缓冲液.请勿使用 Tris 甘氨酸电泳缓液. 1Х MOPS 电泳缓冲液配制后是否需要调节 pH 值? 金斯瑞 Tris-MOPS-SDS Running Buffer Powder (Cat. No:M00138) 在产品设计时已经考虑了成品缓冲液 pH 值.配制成溶液后即可用于蛋白电泳实验,pH ≈ 7.6. 跑完一块胶需要多久? 电泳时间取决于选取的电泳缓冲液、凝胶浓度以及兴趣蛋白的分子量大小.在MOPS 电泳缓冲液,140V 恒压条 件下,电泳时间通常是
50 分钟.一片凝胶电泳时,初始电流大约在 70-100mA.适当提高电泳仪输出电压设定, 可以缩短电泳时间.但高电压会引起电泳实验体系温度上升,导致电泳过程出现不可预料的情况.不推荐超过 180V 的电压设定. ExpressPlus? 预制胶可以用于哪些电泳槽? 只要是兼容
10 x
8 cm 或10 x
10 cm 丙烯酰胺凝胶的垂直型电泳槽,ExpressPlus? 预制胶都有良好的兼容性. 为什么在蛋白转印时凝胶变的很粘? 低浓度凝胶质地较软,转膜时易受热,与转印膜粘连. 其他公司的出品的染料是否可以用于金斯瑞预制胶染 色? 每家公司的蛋白染料产品配方不同.以考马斯亮蓝 G250 或R250 为主要成分的染色液与 ExpressPlus? 预制胶产品 兼容性较好.推荐使用金斯瑞出品的 eStainTM L1 蛋白染色仪(Cat.No:L00657)对电泳后凝胶进行处理.目前确 认金斯瑞预制胶与 Thermo Fisher Scientific Inc. 的染料不兼容.天根生化科技(北京)有限公司的考马斯亮蓝快 速染色液可用于 ExpressPlus? 预制胶产品的染色. 过夜脱色会影响条带的锐度吗? 不同的脱色液配方会影响脱色效果.推荐用于过夜脱色的脱色液配方是:15%乙醇,10%乙酸的水溶液. 如使用 eStain 2.0 Protein Staining Device(Cat.No: L02016) ,怎样调整 ExpressPlus? 预制胶的染色时 间? 一般情况下无需调整.对于浓度较高的凝胶,可以尝试增加 1-2 分钟的处理时间,以获得理想的脱色效果. ExpressPlus? 预制胶在室温下稳定吗? ExpressPlus?预制胶在室温下可以保存
1 个月.为获得最佳实验效果,请2-8℃保存. 如何使用传统染色脱色方法处理预制胶? A. 考马斯亮蓝 R-250 使用微波炉染色: 1) 配制染色液:在40%乙醇和 10%醋酸溶液中溶解终浓度为 0.1%(W/V)的考马斯亮蓝 R-250. 2) 配制脱色液:将终浓度为 10%(V/V)乙醇、7.5%(V/V)醋酸溶解在一起. 3) 电泳完成后,撬开胶板取出凝胶,然后放入装有
100 ml 染色液的染色容器中. 4) 盖上容器盖子并放入微波炉中用高热档位加热
8 分钟.为了避免危险,请注意不要让溶液沸腾. 5) 从微波炉中取出染色容器,放在脱色摇床上常温轻摇
5 分钟. 6) 倒掉染色液并用去离子水小心清洗凝胶. 7) 倒掉去离子水,并加入
100 ml 脱色液. 8) 盖上盖子,放入微波炉中用高热档位加热
8 分钟. 9) 倒掉脱色液,加入新的脱色液,重复步骤 8. 10) 从微波炉中取出,放在脱色摇床上常温轻轻震荡至背景清晰. Troubleshooting: Protein Electrophoresis B. 考马斯亮蓝 R-250 常规 染色: 1) 配制染色液:在40%乙醇和 10%醋酸溶液中溶解终浓度为 0.1%(W/V)的考马斯亮蓝 R-250. 2) 配制脱色液:将终浓度为 10%(V/V)乙醇、7.5%(V/V)醋酸溶解在一起. 3) 电泳完成后,撬开胶板取出凝胶,然后放入装有
100 ml 染色液的染色容器中. 4) 放于摇床上轻摇
1 小时. 5) 倒掉染色液并用去离子水小心清洗凝胶. 6) 倒掉去离子水,并加入
100 ml 脱色液. 7) 放于摇床上轻摇
1 小时. 8) 更换新鲜脱色液,继续放于摇床上脱色
1 小时. 9) 重复步骤
7、8 一次. 10) 更换新鲜脱色液,放于摇床上过夜脱色至次日背景清晰. Problems Possible Cause Suggested Solution 条带变形 上样孔中有气泡 或者有凝胶保存缓冲液 加注电泳缓冲液前后,使用注射器吸取缓冲液轻轻冲洗上样孔,将气泡吹出. 样品蛋白浓度过高. 使用上样缓冲液稀释蛋白样品. 条带拖曳、滞孔 样品中含有较大颗粒杂质如细胞碎片、菌体碎片. 高速离心后,取上清液电泳. 蛋白样品(如包涵体蛋白)未充分溶解. 在样品中添加额外的十二烷基硫酸钠硫酸钠(SDS)或者使用上样缓冲液稀释样 品. 上样时,样品溢出到相邻条带. 降低上样量.发现溢出时使用缓冲液冲洗上样孔. 高浓度条带出现在相邻泳 道 上样孔破损. 移除制孔梳时加倍小心.发现上样孔破损后换用新的凝胶. 胶板变形. 在安装预制胶时先移除制孔梳,再固定在电泳槽内. 使用垫片、翻转密封条时注意是否会对凝胶产生过大的压力,导致凝胶变形. 凝胶变干,上样孔萎缩. 打开包装后,防止凝胶干燥. 为防止凝胶变干,可以尽快装置到电泳槽内,并加注电泳缓冲液. 怀疑凝胶变干时,可将凝胶在电泳缓冲液中浸泡一段时间,待凝胶恢复形状后上 样. 泳道整体成外 八 字形 胶板变形. 安装预制胶时先移除制孔梳,再固定在电泳槽内. 使用垫片、翻转密封条时注意是否会对凝胶产生过大的压力,导致凝胶变形. 条带迁移速度过慢 凝胶底部绿色胶带未移除. 移除绿色密封胶带. 凝胶安装不当,电泳槽内槽漏液(与外槽有溶液联通现 象) . 检查内槽密封条、垫片等附件是否安装恰当. 电压设置有误,或者使用了不当的电泳缓冲液. 确认凝胶安装位置,重新安装凝胶. 推荐使用正确浓度的 MOPS 电泳缓冲液 蛋白条带前沿模糊 离子干扰(小分子蛋白电泳容易出现此现象) . 换用 MES 电泳缓冲液. 蛋白条带前沿变黄 电泳缓冲液性能下降,pH 降低. 换用新鲜配制的电泳缓冲液. 凝胶浓度选择不当. 根据凝胶最佳分离范围选用不同浓度凝胶.对于小分子蛋白的分离,请选用较高 分离胶浓度的预制胶产品或者换用专门为小蛋白开发的预制胶产品. 样品蛋白量超出凝胶分离能力. 提高电泳缓冲液用量. 或者使用冰袋对缓冲液降温降温、在低温环境中进行电泳实验等方法改善效果. 蛋白分离效果不佳 样品含盐量过高. 使用透析、超滤,或者稀释的方法降低盐浓度后电泳. 电泳体系温度过高. 提高电泳缓........