PDF《莳萝蒿适应盐渍环境的 Na + 区域化方式和生理特征》

10 个重复. 选取莳萝蒿最幼功能叶测定叶绿素含量[14] . 由于莳萝蒿是羽状深裂叶,因此以鲜重为单位表示 其叶绿素含量. 1.2.2摇 叶片肉质化程度和细胞汁液渗透势的测定 用叶片肉质化程度表示叶片的含水量:首先称 量叶片鲜重(FW),然后将鲜材料放入

105 益 的烘箱 杀青

10 min 后,80 益 烘干至恒重,称量叶片干重 (DW). 叶片肉质化程度=FW/ DW伊100% 每个处理做

5 个重复. 叶片液氮速冻后,放入注射器内室温下溶冰,然 后挤出细胞汁液. 细胞汁液渗透势用蒸汽压渗透压计 (Vapor Pressure Osmometer 5520,Hansatech Instrument Ltd., UK)测定. 每个处理做

5 个重复. 1.2.3摇 叶片光合参数的测定 莳萝蒿幼苗在 20:00 充分暗适应后,在黑暗条 件下用Handy PEA ( Plant Efficiency Analyser;

Hansatech Instrument Ltd., UK)测定其最大光化学效 率( maximal efficiency of PS 域photochemistry, Fv / Fm). 每个处理做

5 个重复. 光合速率( Pn ) 和气孔导度( Gs ) 采用英国 PP system 公司的 Ciras鄄1 型光合测定系统测定. 测定条 件为:CO2 浓度

360 滋mol/ mol、相对湿度 40%,光照

1000 滋mol m-2 s-1 ,温度

25 益. 叶室中莳萝蒿羽状 叶叶面积用 Li鄄3000A 叶面积仪( 美国 LI鄄COR) 测定. 每个处理做

5 个重复. 1.2.4摇根、茎、叶Na+ 含量的测定 将每株植物分成根、茎、叶3部分,分别烘干、称重. 然后取 0.1 g 干重的材料用马弗炉在

500 益充分灰化,用浓硝酸溶解,然后蒸馏水稀释定容. Na+ 浓度用原子吸收光谱仪(Z鄄8000 型, Hitachi, Japan) 测定. 各器官中 Na+ 含量用 滋mol/ g 鲜重表示: 各器官中 Na+ 总量=Na+ 含量伊器官鲜重 每个处理做

5 个重复. 1.2.5摇 叶片质外体和原生质体 Na+ 含量的测定 质外体液体的收集参照 Tetlow 的方法稍加改 动[15] . 取一定数量的完整叶片,将叶片茎基端向下 置于容积为

40 mL 的注射器中,注射器下端出液口 套一容积为 0.5 mL 的Eppendorff 管,放入超速冷冻 离心机中

4 益、400g 离心

10 min,避免细胞破裂. 质 外体液体顺着注射器收集到 Eppendorf 管中,收集到 的质外体 ( apoplast) 液体稀释后测定其 Na+ 浓度 (Ca ). 方法 1.2.2 中得到的细胞汁液[其中含有质 外体 溶液和原生质体(protoplast) 溶液两部分] 4000g 离心

10 min,取上清液用于 Na+ 浓度的测定 (CT ). 参照 Flowers 的方法,假定质外体与原生质体 体积比约为 3颐97,可推算原生质体溶液的平均 Na+ 浓度(Cp )[16] : Cp =(CT 伊1-Ca 伊Va ) / Vp 式中,Va = 1伊3%, Vp = 1伊97%. 每个处理做

5 个 重复. Na+ 在质外体和原生质体中的分布比例计算公 式分别为: Pa =Ca 伊Va / (Ca 伊Va +Cp 伊Vp ) Pp =Cp 伊Vp / (Ca 伊Va +Cp 伊Vp )

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