编辑: lqwzrs | 2019-07-13 |
本产品可增强兔骨髓间质干细胞向成骨细胞方向诱导分化的能力. 本产品仅用于科研用途,不可用于诊断、治疗、临床、家庭及其他用途. 试剂盒组成成分 Rabbit Mesenchymal Stem Cell Osteogenic Differentiation Basal Medium 兔骨髓间质干细胞成骨诱导分化基础培养基
175 mL Rabbit Mesenchymal Stem Cell Osteogenic Differentiation Fetal Bovine Serum 兔骨髓间质干细胞成骨诱导分化培养基专用血清
20 mL Penicillin-Streptomycin 双抗
2 mL Glutamine 谷氨酰胺
2 mL Ascorbate 抗坏血酸
400 μL β-Glycerophosphate β-甘油磷酸钠
2 mL Dexamethasone 地塞米松
20 μL 茜素红染液
10 mL 使用说明 成骨诱导分化完全培养基的配制 1. 使用前,请将血清置于2-8℃环境中过夜解冻直至血清完全溶解,轻晃试剂瓶以确 CBPI0018A5 RBXMX-90021 Page
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6 保血清混合均匀.本公司血清经热灭活处理,解冻后即可使用. 注意:解冻后的血清中可能会含有少量絮状沉淀,这些物质对产品质量无影响.不建议 采取过滤的方法去除沉淀物,此操作会导致血清中部分营养物质流失. 2. 配制前30 min左右,室温溶解抗坏血酸,β-甘油磷酸钠,双抗和谷氨酰胺,轻轻 地上下颠倒试剂管以确保试剂混合均匀. 注意:在打开盖子前先短暂离心(2400 g) ,以确保添加试剂能全部收集. 3. 使用前10 min,室温溶解地塞米松. 注意:在打开盖子前先短暂离心(2400 g) ,以确保添加试剂能全部收集. 4. 用70%乙醇擦拭试剂盒中各瓶/管的开口外壁,室温放置数秒使酒精挥发. 5. 在超净台中无菌地打开以上各瓶/管. 6. 将抗坏血酸、β-甘油磷酸钠、兔骨髓间质干细胞专用胎牛血清、双抗和谷氨酰胺 全部加入兔骨髓间质干细胞成骨诱导分化基础培养基中. 7. 无菌吸取少量基础培养基洗涤各瓶/管,尽可能的将所有组分完整的加入基础培养 基中. 8. 最后将地塞米松加入基础培养基中,吸取0.5 mL基础培养基洗涤试剂管,将混合 物一同加入基础培养基中. 9. 重复操作步骤 8. 10. 轻晃配制好的完全培养基,确保混合均匀之后即可使用. 注意:本公司完全培养基试剂盒中的每个成分均为无菌分装,但为确保完全无菌, 也可以将混合后的完全培养基进行再次过滤除菌(0.22 μm 滤膜) . 培养器皿表面的明胶包被 为了避免诱导过程中间质干细胞出现漂浮现象,建议对成骨诱导使用的培养器皿 表面进行明胶包被. 所需材料 ? 明胶溶液(货号:GLT-11301) 操作 1. 加适量0.1%明胶到培养器皿中,能覆盖整个培养器皿底面的量即可. 2. 摇匀液体使其覆盖整个培养器皿的底面. 3. 将铺有0.1%明胶的培养器皿放置在超净台至少30min. CBPI0018A5 RBXMX-90021 Page
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30 min后弃去明胶,待培养器皿晾干后,即可用于接种细胞. 注意: 包被明胶的培养器皿在无菌和明胶不蒸干的条件下,可以在4℃保存两周. 成骨诱导分化操作规程 所需材料 ? 0.25%Trypsin-0.04%EDTA(货号: TEDTA-10001) ? Phosphate-BufferedSaline (1*PBS) (货号: PBS-10001) ? OriCellTM 兔骨髓间质干细胞完全培养基(货号:RBXMX-90011) ? OriCellTM 兔骨髓间质干细胞成骨诱导分化完全培养基 (货号:RBXMX-90021) 操作 注意:本操作规程以六孔板为例 1. 将OriCellTM 兔骨髓间质干细胞置于37℃,5% CO2的培养箱中培养. 2. 当细胞融合度达到80-90%时,用0.25%Trypsin-0.04%EDTA进行消化. 3. 将消化下来的兔骨髓间质干细胞按照2*104 cells/cm2 的细胞密度接种在事先包被 0.1%明胶的六孔板中,每孔加入2 mL完全培养基.. 4. 将细胞置于37℃,5% CO2的培养箱中进行培养. 5. 当细胞融合度达到60%-70%时,小心的将孔内完全培养基吸走,向六孔板中加入